DNA双酶切后电泳用多大浓度的胶

来源：学生作业帮编辑：神马作文网作业帮分类：生物作业时间：2024/09/30 12:41:17

DNA双酶切后电泳用多大浓度的胶

（拟南芥）基因组 DNA 双酶切不会得到大小一致的片段,而是大小不等片段,HpaII识别4碱基,所以切下来的片段会短些,但是是不会看见条带的,只能看见弥散的拖尾很长的DNA条带.
判定甲基化时用甲基化敏感性限制性内切酶-Southern法,这种方法利用甲基化敏感性限制性内切酶对甲基化区的不切割的特性,将DNA消化为不同大小的片段后再进行分析.HpaⅡ能识别CCGG序列,然而当序列中的胞嘧啶发生甲基化时,HpaⅡ不切割,随后进行Southern杂交明确甲基化状态.根据指定不同片段之间（如500bp和3kb,举例而已,具体最合适的大小请参照文献）的相对比例来判断甲基化的相对变化.
这是一种经典的甲基化研究方法,
优点是：相对简单,成本低廉,甲基化位点明确,实验结果易解释；
缺点是：
1.由于CG不仅仅限于CCGG序列中,因此非该序列中的CG将被忽略；
2.只有检测与转录相关的关键性位点的甲基化状态时,该检测方法的结果才有意义；
3.相对而言,Southern方法较复杂,且需要样本的量大；
4.存在着酶不完全消化引起的假阳性的问题；
5.不适用于混合样本.

求看两张DNA电泳跑胶的图= = 电泳漆的浓度是多少? 琼脂糖电泳可否用于鉴定蛋白质?我的蛋白质量在60000-70000间可否用琼脂糖电泳鉴定可以的话如何设置胶的浓度变性PAGE电泳后的DNA能够切胶回收做测序吗?比如DGGE后的DNA条带. 胶回收后的产物电泳跑不出,排除浓度太淡,还有什么原因呢【请问】怎样根据蛋白质大小确定SDS-PAGE电泳分离胶的浓度? 为什么在DNA电泳上样是要加六倍的上样缓冲液 DNA电泳图的分析中间两条带是什么 DNA电泳没有图像昨天使用CTAB法提取植物的DNA,提取过程中能看到沉淀,但是稀释溶解后,电泳看不到任何条带,而且电泳用琼脂糖凝胶电泳分离DNA 样品时,电泳缓冲液的PH 值应该在什么范围之内? 植物DNA的提用乙醇洗沉淀的时候还有白色的沉淀,但是电泳时只有RNA,没有DNA 蛋白质SDS-PAGE电泳分离胶和浓缩胶的浓度如何确定?上样缓冲液的倍数如何确定?