聚丙烯酰胺凝胶电泳 显影不出来

变性了有利于去除蛋白的非特异性吧,

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在电泳过程中,聚丙烯酰胺凝胶中含有的氯离子等会进入到下方缓冲液中,并且会导致下方缓冲液的pH值改变,因此需要分开回收.

1.聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)根据其有无浓缩效应,分为连续系统和不连续系统两大类,连续系统电泳体系中缓冲液pH值及凝胶浓度相同,带电颗粒在电场作用下,主要靠电荷和分子筛效应.不连续系统中由于缓冲液

最大的不同是聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）用的蛋白质不做任何变性处理SDS-PAGE中的SDS是十二烷基磺酸钠,是蛋白质变性剂,SDS能拆散蛋白质的折叠结构,然后沿伸展的多肽链的表面吸附.使肽链带净负

非变性凝胶里面没加变性剂,一般是SDS.非变性胶跑出来的蛋白能保持其活性一般用做功能试验,如EMSA.由于没有变性剂的原因非变性胶电泳时除了与蛋白分子量有关也会受都电荷的影响,因此对蛋白等电点的确定和

聚丙烯酰胺凝胶电泳是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的电泳方法.在这种支持介质上可根据被分离物质分子大小和分子电荷多少来分离.聚丙烯酰胺凝胶有以下优点：①聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺和N,N'甲叉双丙烯酰胺

凝胶层析的固定相是惰性的珠状凝胶颗粒,凝胶颗粒的内部具有立体网状结构,形成很多孔穴.当含有不同分子大小的组分的样品进入凝胶层析柱后,各个组分就向固定相的孔穴内扩散,组分的扩散程度取决于孔穴的大小和组分

恩,原始的方法是PCR产物与变性缓冲液混合,95或98度变性5到10分钟.变性缓冲液中含有甲酰胺,是一种变性剂.后来出现了核酸外切酶,PCR产物酶切成单链再跑,变性不变性效果可能一样的,不过酶有点贵.

因为染色的时候没有将胶体在银染液中铺开,重叠的地方就会出现银染不均匀的现象.摇床如果摇摆的幅度不大,则要自行震荡铺开.多块胶体注意尽量不要重叠在一起,也会出现胶体出现花纹的现象.

变性:是指蛋白质被SDS变性.变性后,不同蛋白质的荷质比相同,在电泳的涌动速度只跟分子量成正相关.pAGE：既然浓度已经决定了那么凝胶形成的孔径也就固定不变了.电泳中大分子跑的慢,小分子跑得快因此蛋白

实验步骤：凝胶的制备：1、清洗干净两块玻璃板,晾干后按要求装配好垂直电泳板,两块玻璃板的两侧及底部用1%的琼脂糖封边,防止封闭不严而使聚丙烯酰胺液漏出.2、将装好的玻璃电泳板倾斜成45～60℃角.把玻

需要用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,一般是加入SDS,有多条肽链的蛋白质由于变性彼此分离,又因为不同的分子量在凝胶的迁移速度不同,因此形成不同的条带.

变性电泳buffer里面含尿素等变性剂pcr产物dna双链会解离成为单链非变性电泳不会解链dna以双链形式电泳

不一样,两者有一部分成份是相同的,如指示剂溴酚蓝,和增加比重的蔗糖.对于SDS－PAGE的缓冲液,它还含有一定比例的SDS和强还原剂（巯基乙醇或者DTT）,因为SDS－PAGE中蛋白与SDS结合变性是

有两个可能,胶没混匀,或者是APS不是新配的,建议用新配APS溶液试试.再问：谢谢你的回答，我胶应该混匀了，几次了不会每次都没混匀啊。APS是新配的啊。我想请问，你感觉是应该整个溶液都一起凝，还是我这

分离不同荷电量、不同分子量的物质,而使其固定在凝胶中而不是丢失在溶液中.可以调节凝胶浓度而调节网孔大小,以适应你的目标物质的分子量.一般可用于蛋白核酸等两性大分子物质分离分析.

我们经常做这个,是比较基础的东西,你的问题叙述的不是很明确,蛋白多大,用的什么MARKER,跑胶时间,电压,胶浓度是多少都没有交代,而且也没有胶图,仅提几点建议:1.看你的问题,应该是胶浓度太低了,所

如果Marker也没有出带,说明电泳及染色有问题,如电泳缓冲液的配制,胶的制备,染色方法等.如果Marker出带而目的片段没有,说明没有目的片段,应该是前期实验的原因.或跑出胶外,说明片段太小,或电泳

聚丙烯酰胺有分子筛效应和电泳效应,而SDS不具有再答：电泳效应