PBI121的双酶切

来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/11/23 16:42:01
PBI121的双酶切
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解题思路:1甲:10+10×0.7=17元乙:20×0.85=17元甲乙一样省钱2甲:10+(24-10)÷0.7=30乙:24÷0.85=28最多30本所以到甲购买可以买30本解题过程:1甲:10+

真的的近意词真的的意思

你应该问“真”的近义字而不是词

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解题思路:根据题中信息确定反应过程中的氧化剂、还原剂、氧化产物、还原产物,再根据化合价s升降总数相同将方程式配平。结合已知的方程式列关系式,求出未知物质的量即可。解题过程:最终答案:(1)Cr2O72

表达载体构建的问题.我要用PBI121做表达载体,用他上面的35S做启动子,那么我的插入目的基因的启动子是不是要和表达载

要想高效表达就用含有强启动子的载体,至于是你前面问的是否在一个编码区,要根据你所选载体的图谱来设定连接位点

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家姐读音:gajie“家”粤语读法与普通话“嘎”同音“姐”粤语读法与普通话“接”同音

双酶切老是切不完全我PCR克隆了一段200bp的基因片段,然后连接到了T载体,引物2端各有EcoRI和HindIII的酶

BestreactionforEcoRIishighslatbuffer,whileHindIIIislowsaltbuffer.ManycompanieswilltellyouHindIIIwoul

关于实验中的酶切反应小弟我最近在做酶切,做的是HindIII和EcoRI的双酶切,两个酶的缓冲液不同,所以准备两次酶切,

你酶切完后要注意第一次酶切后胶回收的回收率要高,而且这样分两步做很麻烦,你不如用HindIII和EcoRI均具有较高活性的buffer,那样又快质量又高.

请问谁做过Taraka的BamH I 与Fermentas的BstBI的双酶切?如何选择buffer?如何进行分步酶切?

怎么是两个不同公司的呢.分步酶切吧.比如先用Takara的体系BamHI先切一下,我一般过夜酶切,然后酚-氯仿抽一下DNA,然后再用Fermentas的体系BstBI切过夜.

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“偶尔”一词用粤语口语可以说:“间中”.

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1.用普通话的说法应是“日”或“操”.2.唔采佢

双酶切鉴定(或者测序)是否含有目的基因的时候,为何用pMD18-T载体?

通常先分析一下目的基因上存在哪些常见的酶切位点,再选择合适的克隆载体.保证你双酶切的位点在目的基因上不会出现.PMD18-T克隆位点两侧的酶切位点比较多,很常用的.

小气粤语点讲的的的的的的

孤寒.广州地区的粤语方言常常将“孤寒”一语用于比喻“小气”或者“吝啬”.

单酶切和双酶切的定义分别是什么?它们有什么不同?

单酶切就是只用一个限制性内切酶去切你的质粒,环状的质粒就成为线状的了,但质粒的大小不变双酶切用两个限制性内切酶,质粒上就产生了两个缺口,环状质粒就变成两段线状DNA了.回收你需要的那一段,因为它的两端

我构建的穿梭载体,连接好后进行双酶切和PCR两个途径的检测,结果酶切没有条带显示,而PCR确有目的条带!

酶切位点消失啦,测个序看看.再问:测序了,说我的链接质粒没有信号再答:重新做吧,多半不对!

双酶切的20μL反应体系和反应时间如何确定?最好是说明原理.所用的酶都是Takara公司的

模板DNA几百ng-几ug,区别不大酶10.5ul酶20.5ulbuffer去Takara产品目录查双酶切buffer表,按照那个倍数加,有时候需要BSA水补足20ul30或37度,1-5小时都可以.

双酶切的问题我们做是质粒用的双酶切,但是只有一条条带,有没有解决方法么,用单酶切可以么,还有乙醇沉淀法的操作,

首先,你要确定你所切下来的目标条带的分子量大小.如果切下来的片段分子量小的话(小于1kb),经常会出现看不到的情况.因为从质粒上面切下来的片段摩尔数是和质粒一致的,在分子量很小的情况下,等摩尔数的小片

生化实验做了质粒DNA的双酶切,实验用的是BamH1 和EcoR1 .实验老师课上还讲了结果.但是不让拷ppt.我们做出

一个是环状质粒一个是切下来的线形质粒一个是两个酶切位点间的序列

kpnI 与EcoRI 双酶切体系所需缓冲液,是NEB 公司的

BUFFER2如果KPN1是HF的就用4再问:那还用不用加BSA?再答:我一般不管什么切都加了。。。。