mtt要种多少细胞

博凌科为活细胞中的脱氢酶能将MTT还原成不溶于水的蓝紫色产物（甲臜,Formazan),并沉淀在细胞中,而死细胞没有这种功能.二甲亚砜（DMSO）能溶解沉积在细胞中的蓝紫色结晶物,溶液颜色深浅与所含的

如果细胞生长良好25000-30000就可以,你的接种密度不算太高我养的悬浮细胞在密度为40000的时候,测出的OD值太高

MTT是测细胞活性的不能用来计数最简单的是那血球计数板直接给细胞计数麻烦点的就是染DAPI拍照后计数或者过流式

要看你流式用的是哪种方法了.如果单用PI染色,阳性的就是死细胞.细胞膜受损.如果用Invitrogen的Live/Dead方法,死细胞和活细胞都能分别染色.活细胞内ATP充分.酶还有活性.可以产生荧光

四唑盐（MTT）商品名为噻唑蓝操作步骤一、接种细胞1、用胰蛋白酶消化汇合的单层细胞,将细胞收集到含血清的培养基中.　　2、离心细胞悬液,使细胞沉积下来.用培养基重悬细胞,计数.　　3、将细胞稀释至2.

现在应用最多的是CCK-8法.CCK8基本与MTT是一样的,优点是产物溶于水,所以避免了有机溶剂溶解甲月赞的步骤,既节省了时间,还大幅提高了一致性.当然最精确的还是同位素标记法.

四甲基偶氮唑盐比色法(MTT法)由Mosmanm[1]在1983年首创,其原理是活细胞内的线粒体琥珀酸脱氢酶可将MTT还原成蓝紫色甲瓒,而且形成的量与活细胞数量成正比.吸光度~~吸光度

查查文献实验几个试验点

博凌科为一般文献报道的方法,是贴壁细胞在细胞贴壁后加药物（一般为上板后24h）,而悬浮细胞是上板同时加.但是,在操作中具体要根据实验本身要检测的指标来确定时间.如果是做有关细胞增殖的药物,加药的时机影

博凌科为贴壁细胞一般在实验前1-2日接入96孔板.太晚,细胞在传代后有一个16小时左右的停滞期,此时代谢变慢,增殖缓慢,此时的MTT数值太低；太早,实验期间,细胞生长过头,此时有死亡和凋亡的细胞,实验

MTT四唑蓝是一种能接受氢原子的黄色染料,可作用于活细胞线粒体的呼吸链,被活细胞的线粒体琥珀酸脱氢酶还原为水不溶性的深紫色结晶状产物formazan,MTT被活细胞吸收以及被还原为深紫色结晶物是需要一

统计百分比啊不然两组细胞总数不一样的话光比较测出来的数据是没有意义啦

博凌科为我觉得细胞的浓度并不需要那么精确,关键是接种于每孔的细胞数就大致处于同一水平.比如我做MTT,起初用的细胞浓度为5000/ml,每孔100ul,培养3天观察,发现细胞数太少,各孔OD值反面难于

MTT原理\x09MTT全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazoliumromide,汉语化学名为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-

博凌科为（1）OD值转换为细胞数似乎不太好操作,就像楼上战友说的那样,影响因素比较多,单个细胞活性与MTT转化量是有关系的,所以需要有一个标准细胞活性的参照才能计算细胞数.（2）OD应该在0.2~1之

不可以,各种实验用的抗体的特性是不一样的,不能通用,流式细胞术检测细胞凋亡最好的是BD的,但是价格也是最贵的,现在有很多国产的,价格便宜的很,结果也不错.我在南京用过凯基的,还说的过去

是生长成70%,就是细胞贴壁覆盖率达到70%.其实这并不那么严格,如果你的这个细胞长的比较快,比如说癌细胞那样,那就细胞传到培养板时密度要小一些.不然没等你做完实验细胞就长满,漂起来了.如果长的较慢那

这要看药物的性质,不同药物其作用时间不同.如果没有类似药物的数据作参考,就要观察不同时间点.第一次最好多做几个点.

SCI论文我问过几个公司,都可以帮忙写,但是威斯腾生物那边给我说的是如果收录失败,全额退款,我觉得这个可以去试试,收录就赚了,没收录也没损失.免得花了大价钱,结果白忙活.

用Origin或者Excel都可以的