分别阐述用SDS裂解法.蛋白酶K裂解法和溶菌酶裂解法裂解细胞的依据

盐酸使细胞的细胞壁软化,并使细胞间的中胶层物质溶解,从而达到分离细胞的目的.（还用来杀死细胞）蛋白酶用于除去细胞间的粘连蛋白.再问：以上您解释的很棒。那盐酸对于没有细胞壁的细胞也具有杀死的作用吗？原理

注意事项（1）由于与凝胶聚合有关的硅橡胶称、玻璃板表面不光滑洁净,在电泳时会造成凝胶板与玻璃板或硅橡胶条剥离,产生气泡或滑胶；剥胶时凝胶板易断裂,为防止引现象,所用器材均应严格地清洗.硅橡胶条的凹槽、

你用的试剂盒吗?缓冲是调ph的,蛋白酶分解蛋白,EDTA是螯合二价离子,失活DNA酶,SDS是裂解细胞,变性蛋白用的,TE缓冲和STE缓冲大概是试剂盒里面的,改变DNA与硅胶亲和力的.这个名字不同的试

我也想知道,找了一下:酚是强烈的蛋白质变性剂,能有效使蛋白质变性而除去,氯仿有强烈的脂溶性,去除脂类杂质,本身酚：氯仿：异戊醇=25：24：1的主要作用是抽提蛋白质

http://blog.sina.com.cn/s/blog_60aa3ed50100dhdh.html这个可能有点参考价值.主要就是配标准蛋白质溶液测定吸光度,做出标准曲线,然后将蛋白酶加入样品中,

都是蛋白酶吧~=

一般用水连续透析48~72h即可.缓冲液采用双蒸水,或者加入少量0.1mol/l的硫酸即可,还能用来检测是否透析完全.

并远远超越其原来的电荷,从而使天然蛋白质分子间的电荷差别就降低乃至消除.与此同时蛋白质在SDS的作用下结构变得松散,形状趋向—致.多肽与SDS结合的量几乎总成正比而与其序列无关.所以各种SDS蛋白质复

跑个电泳看看DNA质量吧,是不是用乙醇沉淀时沉淀的颜色就是黄色的,很有可能是色素,用酚氯仿多抽提几次试试看,实在不行,借个硅胶柱,一般的提取试剂盒里都有,调整好pH和盐浓度,过下柱子,色素一般会吸附到

你如果是高中生,并且这属于生物题,那就是如下解释：1,用缓冲液更能保证蛋白质的活性,用蒸馏水虽说没有严重错误但对蛋白质活性的保持还是有风险的,若实验中不小心溅进去酸或碱,显然缓冲液更保险.如果是更详细

需要电泳槽一套（含置胶板,几组玻璃,梳子等）,电泳仪一个.如果有跑DNA的电泳仪是可以通用的.资金充裕的话选择biorad的电泳槽吧,比较常用的是mini3否则可以选择北京六一的.印象中六一的好像一套

蛋白质的形状影响凝胶过滤时候的行为,分子形状长的蛋白质在凝胶过滤的时候有类似于分子较大的蛋白的行为,用SDS-PAGE测定的蛋白质分子量应该比较准确,因为变形后的蛋白质迁移速度只取决于蛋白质分子大小

裂化就是在一定的条件下,将相对分子质量较大、沸点较高的烃断裂为相对分子质量较小、沸点较低的烃的过程.在催化作用下进行的裂化,又叫做催化裂化.裂解是石油化工生产过程中,以比裂化更高的温度（700℃～80

蛋白酶啊酶就是蛋白质

看起来是构象不正确,可能是折叠或修饰的问题.如果只要求可溶,纯化后稀释一下,也许就不沉淀了.也可以试试加一些稳定剂,如甘油,DTT,分子伴侣等.如果要正确折叠的,就比较麻烦,可以用真核表达系统试试.T

sds：变性剂,用来变性蛋白和破坏蛋白二级结构.AB：凝胶前体AP和TEMED用来聚合凝胶.SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳的英文缩写是sds-page

SDS是表面活性剂,用于将含DNA的成分从载体上洗脱下来.PK是用于消化细胞,释放DNA的.两种成分可以同时加入,不会影响效能.PK主要还是受温度影响较大,一般用37-56摄氏度来消化.现在很多人不再

两种方法原理不同,有差异是正常的.如果差距较大,要仔细分析.一般凝胶层析是非变性的,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳是变性的,二硫键也被还原,所以是亚基（肽链）分子量.凝胶层析与分子形状有关,一般marke

1比1和1比10的结果不可能一样的我觉得是底物浓度太小了,所以1比1和1比10的结果没有太大区别,你看看提高底物用量或者减少溶液体积试试

提取基因组DNA和细胞核DNA是不同的方法提取细胞核要先把细胞破碎分离出细胞核,要在甘油或其他保护剂中进行SDS十二烷基磺酸钠：可破坏细胞膜、核膜,并使组织蛋白与DNA分离CATB是一种抽提液,破坏细